Регистрация заражения препаратов крови бесконтактным методомКазанкин Дмитрий Сергеевич, Широносов Валентин ГеоргиевичУчебно-научный центр "Резонансные Технологии" Удмуртского Государственного Универси-тета, Научно-исследовательский центр "ИКАР" ikar@udm.ru (Сб. тезисов ВНКСФ-12, г. Новосибирск, 2006.- с. 528-529.) Впервые на существование собственного слабого излучения (в частности в ультрафиолетовой области спектра) клеток животных и растений, которое индуцирует деление окружающих клеток, указал А. Г. Гурвич [1] и назвал его "митогенетическими лучами". Природа химических реакций, обусловливающих свечение, до сих пор еще далеко не ясна. После появления первых работ по собственной "сверхслабой" хемилюминесценции клеток, тканей и препаратов крови, были сделаны многочисленные попытки использовать этот показатель в целях клинической диагностики. При ряде патологий разница была довольно существенной. И все же измерение неактивированной хемилюминесценции в широкую клиническую практику пока не вошло, в отличие от хемилюминесценции в присутствии активаторов [2]. С другой стороны, как показывают опыты [3?7] и расчеты [7] собственное "слабое" излучение от неравновесных термодинамических систем отнюдь не мало и его регистрация (при электролизе растворов, биохимических реакциях) достаточно просто осуществляется бесконтактным методом - по изменению ОВП (окислительно-восстановительного потенциала) водных растворов, либо спектральными методами [8, 9]. Поэтому возникла идея по использованию результатов работ [3-9] для клинической диагностики. С этой целью был проведен опыт по искусственному заражению препаратов крови микробами Lactobacillus plantarum. Схема опыта (от 15.12.2005). Стандартные полипропиленовые пробирки (10 мл, с толщиной стенок ~0,9 мм и герметично закрывающимися пробками) с соблюдением стерильности заполнялись свежеприготовленной асептической взвесью форменных элементов крови человека (V=4,5 мл), восстановленной физиологическим раствором из эритромассы (2:1). Далее суспензия эритроцитов искусственно засевалась Lactobacillus plantarum в количестве 8x105 и 16x105 клеток на пробирку. Исследовалось также влияние неравновесной системы - свежеприготовленного анолита нейтрального катодно-обработанного (АНК) на процесс размножения микроорганизмов и динамику препаратов крови. При условиях идентичных опытным в пробирки добавлялось по 0,4 мл АНК с концентрацией активного хлора 500 мг/л. Все пробирки помещали в стандартные 20 мл пластиковые шприцы "Луер". Пространство между пробиркой и шприцом заполняли дистиллированной водой (V= 8 мл) и герметизировали резиновой прокладкой. Шприцы помещали в термостат с T= + 37o C. Все измерения рН и ОВП воды проводились через каждые 24 часа на приборе рН-150 относительно хлорсеребряного электрода (ХСЭ) и эталона сравнения (дистиллированная вода в шприце с пустой внутренней пробиркой).
Результаты опыта представлены на рис.1. Каждая точка на графике - среднее арифметическое измерений 5 индивидуальных проб стандартное отклонение. За время наблюдения отмечен незначительный дрейф ОВП эталонной воды с +308 мВ до +260 мВ (ХСЭ), рН в контроле, опыте и эталоне при этом изменялся незначительно ~0,3 единицы. Таким образом, живые системы (как свежеприготовленные препараты крови, так и микроорганизмы) в процессе своей жизнедеятельности активно излучают и взаимодействуют. При этом наблюдается бесконтактная активация жидкостей (БАЖ) сверхкогерентным электромагнитным излучением от резонансных микрокластеров [7, 8]. Открытие феномена БАЖ от живых систем может стать основой для новых чрезвычайно простых и сверхчувствительных бесконтактных методов учета состояния живой системы без вмешательства в ее структуру, новых методов диагностики в медицине, микробиологии и в других отраслях. Список публикаций:
|